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疫苗用mRNA遞送系統(tǒng)性能的決定因素

關(guān)鍵詞:mRNA遞送
時間:2022-01-20 15:42:44


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mRNA遞送系統(tǒng)性能的決定因素是多因素且相互作用的,包括:(1)它們遞送到適當(dāng)細(xì)胞并有效釋放mRNA到細(xì)胞質(zhì)翻譯機(jī)制的效力或能力;(2)它們的佐劑性,,可增強(qiáng)免疫應(yīng)答;(3)將注射部位過度炎癥或全身分布和脫靶表達(dá)可能引起的不良事件或毒性的任何作用降至低,。

  1、劑量

  目前SARS-CoV-2臨床試驗正在追求的大范圍劑量(1-100μg)容易理解mRNA遞送系統(tǒng)的效力,。

  人體試驗中的劑量明確分為核苷修飾RNA(Moderna,,BioNTech)較高的30-100μg劑量、未修飾RNA(CureVac,,Translate Bio)較低的7.5-20μg劑量,,甚至自我擴(kuò)增RNA(Arcturus,倫敦帝國理工學(xué)院)較低的1-10μg劑量,。

  在確定這些劑量時,,考慮兩個因素:中和抗體滴度水平和與恢復(fù)期血漿相比達(dá)到的T細(xì)胞應(yīng)答,以及每個劑量下發(fā)生的不良事件的頻率和嚴(yán)重程度,。

  似乎存在一個相當(dāng)窄的接受窗口,,其中達(dá)到保護(hù)作用所需的劑量也接近于產(chǎn)生不可接受的頻率和嚴(yán)重程度的不良事件的劑量,即所有i期臨床試驗中試驗停藥的高劑量,。

  與恢復(fù)期血漿相比,,在BioNTech 1期試驗中檢測的兩種改良核苷構(gòu)建體具有較高的中和滴度,其中編碼膜結(jié)合全長刺突蛋白的較大構(gòu)建體具有較低的不良事件頻率和嚴(yán)重程度,,因此選擇其用于3期研究,。

  值得注意的是,劑量以質(zhì)量表示,,而摩爾劑量取決于結(jié)構(gòu)的長度,,此外,實際翻譯的mRNA量是其中的一小部分,,取決于遞送系統(tǒng)的效率和靶向特性,。

  在感染性疾病的預(yù)防性mRNA疫苗的動物研究中,當(dāng)使用魚精蛋白,、樹狀大分子和早期陽離子脂質(zhì)系統(tǒng)時,,在小鼠體內(nèi)的10-80μg范圍內(nèi)初始劑量能夠產(chǎn)生相當(dāng)高的中和抗體或免受病毒攻擊的保護(hù)能力。

  當(dāng)使用近的LNPs時,,當(dāng)給予兩次時,小鼠中和所需的劑量顯著降低到接近1μg水平,,而對于未修飾的mRNA,,劑量似乎較低,接近0.25μg,。自我擴(kuò)增mRNA的劑量可以更低,,如0.1μg給藥兩次或2μg給藥一次,。

  在較大的動物模型(倉鼠、雪貂和非人靈長類動物)中,,有限的研究表明其劑量范圍較寬,,為5μg至200μg,無明顯模式,。有趣的是,,當(dāng)使用體表面積將人用劑量轉(zhuǎn)換為動物劑量時,60 kg人的100μg劑量相當(dāng)于3 kg恒河猴的15μg劑量和20 g小鼠的0.4μg劑量,。

  人們強(qiáng)烈希望提高給藥效率,,以降低劑量并維持效價,因為這有可能通過減少mRNA和給藥溶劑的局部反應(yīng)和脫靶效應(yīng)來降低不良事件頻率和嚴(yán)重程度,。減少劑量還將降低所需原料的量和與每個個體接種相關(guān)的成本,。

  特別是,目前的COVID-19大流行使人們關(guān)注mRNA LNP疫苗的一些重大供應(yīng)鏈和生產(chǎn)能力限制,,可以用更高效的遞送系統(tǒng)來改善,。

  下表中體內(nèi)預(yù)防性接種中的mRNA劑量顯示了不同mRNA遞送系統(tǒng)和不同種屬誘導(dǎo)中和抗體滴度所需的mRNA劑量,或提供病毒攻毒保護(hù)的劑量,。與早期遞送系統(tǒng)相比,,用于mRNA遞送的脂質(zhì)納米顆粒(LNPs)的出現(xiàn)將所需劑量降低了約10倍。

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  2,、效力和遞送效率

  有許多研究試圖確定LNP和其他核酸遞送系統(tǒng)的結(jié)構(gòu)-功能關(guān)系,。LNP常被引用的決定其效力或遞送效率的特征是其pKa

  pKa是LNP中50%可電離脂質(zhì)質(zhì)子化的pH值,。迄今為止,,LNP pKa僅用稱為TNS的染料結(jié)合測定法測量,TNS帶負(fù)電荷,,結(jié)合帶正電荷的LNP后出現(xiàn)熒光增強(qiáng)[88],。在覆蓋廣泛pH值范圍的緩沖液中與TNS孵育的LNPs的熒光測量用于推斷染料與表面電荷的結(jié)合,當(dāng)出現(xiàn)大熒光的一半時,,即得到pKa估計值,。

  眾所周知,基于MC3的Onpattro LNP在IV給藥后沉默肝細(xì)胞的佳pKa為6.4,。對于任何能夠影響肝細(xì)胞沉默的LNP,,其TNS pKa在6.2-6.8范圍內(nèi)都有一個非常尖銳的佳值。

  解釋這種pKa依賴性的極好模型是基于LNP中的可電離脂質(zhì)在pH 7.4時接近中性,,而內(nèi)化進(jìn)入細(xì)胞后,,內(nèi)涵體pH明顯下降,隨著內(nèi)涵體途徑吞噬的推進(jìn),從而逐漸質(zhì)子化可電離脂質(zhì),,然后,,它將與內(nèi)涵體的陰離子內(nèi)源性磷脂結(jié)合,并破壞其雙層結(jié)構(gòu),,將mRNA釋放到細(xì)胞質(zhì)中進(jìn)行核糖體裝載,。

  內(nèi)涵體破壞需要可電離脂質(zhì)的額外特征,即脂質(zhì)尾部橫截面大于其頭基的錐形形態(tài),。這使得可電離的脂質(zhì)/內(nèi)涵體磷脂離子對與雙層不相容,,更可能形成可破壞內(nèi)體膜的倒六角形相等結(jié)構(gòu)。這被稱為分子形狀假說,,解釋了為什么在飽和C18烷基鏈中引入一個或兩個雙鍵會產(chǎn)生更多的圓錐形和更少的圓柱形形態(tài),,即膜破壞和溶酶體溶解。

  這兩個C18亞油酸尾,,結(jié)合二甲胺頭基的適當(dāng)調(diào)整pKa,,是MC3可電離脂質(zhì)的明確特征。替代MC3進(jìn)行mRNA遞送的可電離脂質(zhì)保留了pKa的需求,,但通過在烷基尾部引入更多的分支來追求更大的內(nèi)體溶解特性,。

  例如,Moderna的脂質(zhì)H和脂質(zhì)5具有三個烷基尾,,Arcturus的脂質(zhì)2,2(8,8)4 C CH3也是如此,,而Acuitas ALC-0315具有四個烷基尾,A9具有五個烷基尾,。這種增強(qiáng)的錐形形態(tài)可能是為什么包含這些可電離脂質(zhì)的LNPs是更有效的遞送載體,,具有更大的內(nèi)體釋放的原因。

  盡管LNP pKa和分子形狀假說被公認(rèn)為有助于LNP遞送效率,,但其他因素也很重要,,如PEG–脂質(zhì)在LNP表面的穩(wěn)定性,以及乙醇溶液中4種脂質(zhì)的比例,,終決定了LNP超微結(jié)構(gòu),。

  如上所述,PEG–脂質(zhì)通過提供親水性外殼控制LNP大小,,限制組裝過程中的囊泡融合,,使較高的PEG–脂質(zhì)濃度產(chǎn)生較小的LNPs。例如,,一項研究表明,,PEG脂質(zhì)的摩爾分?jǐn)?shù)從0.25%變?yōu)?%可使LNP大小從117 nm減小至25 nm,肝細(xì)胞沉默的佳大小為78 nm,,由2.5%PEG脂質(zhì)生成,。

  由于PEG–脂質(zhì)的烷基尾有14個碳,,它沒有穩(wěn)定地錨定在LNP表面,,被發(fā)現(xiàn)在循環(huán)中從LNP逐漸脫落,,同時可電離脂質(zhì)MC3和DSPC的脫落。這種PEG脫落被認(rèn)為在某個時間點使LNP有轉(zhuǎn)染能力,,但是,,如果太極端,導(dǎo)致可電離脂質(zhì)和DSPC的快速丟失,,這將對內(nèi)體釋放產(chǎn)生負(fù)面影響,。例如,通過將烷基尾延伸到18個碳,,PEG–脂質(zhì)沒有脫落,,但在肝細(xì)胞中也沒有沉默。

  另一方面,,加入較高濃度的PEG使顆粒變小,,導(dǎo)致更快的脫落,可電離脂質(zhì)的損失和沉默減少,。LNP的不穩(wěn)定和動態(tài)性質(zhì)目前只是部分了解,。另一項研究還發(fā)現(xiàn),與100 nm處的較大LNP(0.5%PEG-脂質(zhì))以及48 nm處的較小LNP(3%PEG-脂質(zhì))相比,,用1.5%PEG-脂質(zhì)制成的中等大小直徑64 nm的LNP對mRNA遞送更有效,,與上述研究相似。

  然而,,通過改變四種脂質(zhì)的摩爾比,,在64 nm 1.5%PEG–脂質(zhì)LNP中發(fā)現(xiàn)的佳值下保留LNP PEG層下DSPC的計算密度,這些研究者能夠制造更大的100 nm LNPs,,與64 nm大小的LNPs相比,,mRNA表達(dá)增加兩倍。因此,,除了LNP pKa,、可電離脂質(zhì)分子形狀和PEG–脂質(zhì)的動力學(xué)外,LNP超微結(jié)構(gòu)的更詳細(xì)特征和各組分的狀態(tài)在確定效價方面也很重要,。

  3,、內(nèi)涵體釋放

  另詳細(xì)研究了siRNA-LNPs的內(nèi)體釋放細(xì)胞攝取和內(nèi)體運輸,并假定與mRNA LNPs的攝取和內(nèi)體運輸相似,。

  對于MC3 LNP,,在電子顯微鏡下使用膠體金顆粒計數(shù)進(jìn)行的定量研究表明,只有2%的內(nèi)體siRNA實際上從內(nèi)體逃逸到細(xì)胞質(zhì)中,,導(dǎo)致每個細(xì)胞有幾千個siRNA分子可用于沉默,。

  然而,,這個數(shù)字與在治療相關(guān)濃度下每個細(xì)胞與RISC相互作用的功能活性siRNA的估計水平在相同的范圍內(nèi)。因此,,絕大多數(shù)siRNA注定會發(fā)生內(nèi)體降解或通過多泡體(晚期內(nèi)體)再循環(huán),,在外泌體中釋放。

  增加LNPs的內(nèi)體溶解行為是提高遞送效率的中心方法,,主要是通過pKa調(diào)整LNP和通過增加可電離脂質(zhì)的錐形形態(tài),。對于后者,Lipid H[42]和Lipid 5[101],,在MC3中含有三個分支而在MC3中含有兩個分支,,但具有相似的pKa,與MC3相比,,內(nèi)體釋放增加了4倍,。Acuitas ALC-0315的內(nèi)體釋放尚未見報道;但其肝細(xì)胞沉默效率是MC3的10倍,,提示其更多的錐形四分支結(jié)構(gòu)也具有更高的內(nèi)體釋放,。

  因此,這些新一代的可電離脂質(zhì)似乎實現(xiàn)了內(nèi)體釋放,,與MC3 siRNA-LNPs發(fā)現(xiàn)的2-5%相比,,接近15%或更高。這方面的挑戰(zhàn)是缺乏一種可靠的標(biāo)準(zhǔn)化內(nèi)體釋放方法,,可以廣泛實施,。已經(jīng)開發(fā)了許多方法,但通常僅針對一個實驗室組,。

  近還發(fā)現(xiàn)mRNA發(fā)生胞吐作用的量與釋放到細(xì)胞質(zhì)中的量相似[150],。MC3 LNPs在晚期內(nèi)體和MC3的NP 1復(fù)合物中解體,mRNA被重新包裝成從細(xì)胞中輸出的外泌體,。這些內(nèi)-外泌體保持了與它們來源的原始MC3 LNPs相似的mRNA遞送能力,,但可以運輸?shù)讲煌慕M織,似乎免疫激活較少,。LNPs遞送的mRNA的這種外泌體再分布的潛在意義仍有待探索,。

  4、電荷和配體介導(dǎo)的靶向作用

  早期的脂質(zhì)納米顆粒使用永久帶電不可電離且很大的陽離子脂質(zhì),,由于它們的永久正電荷,,被迅速調(diào)理,一般靶向肺,。

  BioNTech的研究小組減少了DOTMA/DOPE mRNA LNPs中陽離子DOTMA的量,,直到NP比率小于1時,陰離子mRNA過量導(dǎo)致凈電荷為負(fù)電荷,。靜脈注射這些帶負(fù)電荷的300 nm大的mRNA LNPs后,,產(chǎn)生脾臟靶向作用,,樹突狀細(xì)胞中的mRNA表達(dá),它們能夠介導(dǎo)腫瘤免疫治療的適應(yīng)性以及I型IFN介導(dǎo)的先天性免疫機(jī)制,。

  同樣,,使用C12-200原型LNP產(chǎn)生脾臟靶向mRNA LNPs,但用小的樹突可電離脂質(zhì)Cf-Deg-Lin替換C12-200,,它具有4個亞油酸烷基鏈和4個氮原子,,TNS pKa為5.7,。LNP的這種非常低的pKa將確??呻婋x脂質(zhì)在pH低于7時才被質(zhì)子化,這種LNP可以承擔(dān)mRNA的凈負(fù)電荷,,可一直維持到細(xì)胞內(nèi)體途徑吞噬,,因此類似地運輸?shù)狡⑴K。

  他們發(fā)現(xiàn)脾臟中表達(dá)mRNA的主要細(xì)胞群是B淋巴細(xì)胞,,根據(jù)流式細(xì)胞分析,,其中7%的B淋巴細(xì)胞表達(dá)mRNA。近,,使用三種不同的堿性LNPs實現(xiàn)了電荷介導(dǎo)的靶向作用,,MC3、C12-200或5A2-SC8作為可電離脂質(zhì)混合在永久性陽離子脂質(zhì)(DOTAP)或永久性陰離子脂質(zhì)(18 Pa)的一定摩爾分?jǐn)?shù)中,,賦予LNPs凈正性,,凈負(fù)電荷或中間近中性凈電荷。

  與上述發(fā)現(xiàn)一致,,高陽性LNPs靶向肺部,,高陰性LNPs靶向脾臟,而中間電荷水平主要靶向肝臟,。已證明肝臟靶向作用依賴于Apo-E與近中性脂質(zhì)體或LNPs的結(jié)合,,而帶負(fù)電荷的脂質(zhì)體不會發(fā)生這種情況。

  值得注意的是,,上述所有電荷介導(dǎo)的靶向研究均使用IV給藥進(jìn)行,,尚未檢查通常用于疫苗接種的途徑,如肌內(nèi)或皮內(nèi)途徑,。然而,,大多數(shù)分析肌內(nèi)注射后表達(dá)的研究確實檢測到mRNA LNPs的全身轉(zhuǎn)運,其在肝臟中快速和強(qiáng)烈表達(dá),,同時在肌肉和引流淋巴結(jié)中表達(dá),。

  因此,這些特殊的LNPs似乎進(jìn)入脈管系統(tǒng),,隨后由于被動的ApoE介導(dǎo)的靶向作用在肝細(xì)胞中表達(dá),,這并不奇怪,,因為它們是為肝細(xì)胞靶向作用而設(shè)計的。然而,,免疫原的這種全身分布和表達(dá)可能產(chǎn)生全身細(xì)胞因子,、補(bǔ)體激活,并導(dǎo)致其他潛在的不良反應(yīng),,可能放大不良事件的頻率或嚴(yán)重程度和/或損害免疫應(yīng)答的產(chǎn)生,。后,配體介導(dǎo)的LNPs靶向作用的研究數(shù)量有限,。

  通過將CD31(PECAM)抗體與LNP偶聯(lián)并血管內(nèi)注射實現(xiàn)肺內(nèi)皮細(xì)胞靶向,。然后,肝臟中肝細(xì)胞導(dǎo)向的LNP大部分重定向至肺,。使用VCAM配體的類似方法成功地將LNPs靶向大腦炎癥區(qū)域,,并減輕TNF-α誘導(dǎo)的腦水腫。

  使用甘露糖基化脂質(zhì)體也可以更有效地轉(zhuǎn)染體外樹突狀細(xì)胞,,這可能是一種適用于疫苗接種的策略,。還開發(fā)了識別靶向特定細(xì)胞類型配體的高通量篩選方法,可能適用于靶向特定樹突狀細(xì)胞亞群,。

  5,、脂質(zhì)納米顆粒的佐劑性

  脂質(zhì)納米顆粒具有自身的佐劑活性。

  一項在小鼠(10μg劑量)和非人靈長類動物(100μg劑量)中進(jìn)行的核苷修飾mRNA LNPs(編碼各種免疫原)研究顯示,,與滅活病毒相比,,抗原特異性濾泡輔助性T細(xì)胞(Tfh)和生發(fā)中心B細(xì)胞(GC B)的數(shù)量增加。

  Tfh細(xì)胞驅(qū)動免疫球蛋白類別轉(zhuǎn)換,、親和力成熟以及長期B細(xì)胞記憶和漿細(xì)胞,。當(dāng)FLuc mRNA LNP與蛋白亞單位HA免疫原共同給藥時,發(fā)現(xiàn)了LNP本身的佐劑特性,,生發(fā)中心B細(xì)胞數(shù)量增加了4倍,,盡管與單獨蛋白相比,Tfh細(xì)胞的數(shù)量沒有增加,。

  因此,,LNP似乎放大了GC B細(xì)胞的反應(yīng),特別是對核苷修飾的mRNA LNP,。另一項研究使用來自默克的不對稱可電離脂質(zhì)研究了LNPs作為乙型肝炎蛋白亞單位疫苗的佐劑,。

  LNPs與蛋白亞單位疫苗共同給藥增強(qiáng)了B細(xì)胞對與已知疫苗佐劑相當(dāng)水平的反應(yīng),包括基于鋁的佐劑,、寡核苷酸和TLR4激動劑,、3-O-脫酰基單磷酰脂質(zhì)a(MPL),。LNPs引起了強(qiáng)效的抗原特異性CD4 + 和CD8 + T細(xì)胞應(yīng)答,,Th1與Th2偏倚可能進(jìn)一步受到LNP中包含額外佐劑的影響,。該組使用登革病毒免疫原進(jìn)行的后續(xù)研究發(fā)現(xiàn),LNP中的佐劑活性同樣較強(qiáng),,且該活性取決于是否存在可電離脂質(zhì),。

  脂質(zhì)體中的脂質(zhì)組分之前也被認(rèn)為在粘膜疫苗中具有佐劑活性。

  6,、mRNA LNPs的注射部位反應(yīng),、安全性、耐受性,、反應(yīng)原性

  在大鼠和非人靈長類動物中,,對表達(dá)hEPO的MC3核苷修飾的mRNA LNPs進(jìn)行靜脈注射給藥的一般安全性研究發(fā)現(xiàn),劑量高達(dá)0.3 mg/kg時出現(xiàn)輕度毒理學(xué)事件,,該劑量是預(yù)期治療劑量的10倍以上,。

  大鼠中的主要結(jié)果為白細(xì)胞計數(shù)增加、所有劑量下的凝血參數(shù)變化以及肝損傷,。非人靈長類動物顯示淋巴細(xì)胞耗竭伴輕度和可逆的補(bǔ)體激活。這些結(jié)果與相同LNPs用于siRNA遞送的早期毒理學(xué)研究一致,,其中在6 mg/kg時觀察到大鼠死亡,,而無可見有害作用水平(NOAEL)確定為1 mg/kg。

  觀察到血清生化參數(shù)(ALT,、AST和TBIL)升高3 mg/kg以上,、血尿以及肝臟(空泡形成、炎性細(xì)胞浸潤,、纖維化,、出血和肝細(xì)胞壞死)、脾臟(淋巴萎縮和壞死)和腎臟(腎小管變性/再生)的鏡檢結(jié)果,?;颊咧械陌踩越Y(jié)果包括輸注相關(guān)反應(yīng)(15%的患者,推測為補(bǔ)體介導(dǎo))和促炎性細(xì)胞因子一過性升高,。

  值得注意的是,,上述IV給藥劑量(如0.3 mg/kg)比當(dāng)前使用IM給藥的SARS-CoV-2臨床試驗高10倍以上。盡管如此,,當(dāng)前人體試驗中的這些較低劑量仍可誘導(dǎo)局部注射部位反應(yīng)和全身不良事件的高頻率和有時中度嚴(yán)重程度,。目前,關(guān)于這些動物中人類不良事件的相關(guān)性,,發(fā)表的動物研究很少,。

  使用MC3 LNP進(jìn)行廣泛的恒河猴研究,觀察注射部位和mRNA表達(dá)的轉(zhuǎn)運,,以50μg劑量肌內(nèi)或皮內(nèi)注射核苷修飾的mRNA(編碼流感免疫原H10 mRNA),。他們發(fā)現(xiàn)4-24h內(nèi)注射部位的細(xì)胞快速浸潤,,可由LNP單獨驅(qū)動,主要由中性粒細(xì)胞和單核細(xì)胞組成,。表達(dá)mRNA的主要細(xì)胞類型為注射部位和引流淋巴結(jié)中的多個單核細(xì)胞和樹突狀細(xì)胞亞群,。

  T細(xì)胞應(yīng)答的啟動僅限于引流淋巴結(jié),LNP單獨不能誘導(dǎo)抗原呈遞細(xì)胞的CD80,。疫苗特異性CD4 + T細(xì)胞的持續(xù)生成僅發(fā)生在疫苗引流淋巴結(jié)中,,其中mRNA編碼抗原的檢測在24h達(dá)到峰值,而抗體應(yīng)答持續(xù)數(shù)周,。使用編碼狂犬病病毒糖蛋白G(RABV-G)的非修飾mRNA,,以Acuitas LNP遞送小鼠0.5-10μG劑量以及非人靈長類動物10μG和100μG劑量,也報告了與上述一致的結(jié)果,。

  他們還發(fā)現(xiàn),,LNP單獨介導(dǎo)了肌肉注射部位和引流淋巴結(jié)中的細(xì)胞因子生成,但需要認(rèn)識到由于通過血液的運輸和在肝臟中的表達(dá),, 可以在系統(tǒng)中檢測到IL6,。在10μg和100μg劑量下,在非人靈長類動物中均觀察到注射部位紅斑和水腫,。

  值得注意的是,,mRNA遞送系統(tǒng)中使用的LNPs的尺寸范圍為10-100 nm,是淋巴管攝取的佳尺寸,,脂質(zhì)聚乙二醇化可改善淋巴管中的滯留,。

  自輝瑞/BioNTech疫苗的緊急使用批準(zhǔn)以來,已觀察到數(shù)例急性過敏反應(yīng),,相當(dāng)于每100,000次疫苗接種中1例,,約為其他疫苗的10倍。這種過敏反應(yīng)的一個可能來源是抗PEG抗體在一般人群中的流行,,由于在LNPs中使用PEG–脂質(zhì),,這可能在患者亞組中觸發(fā)過敏反應(yīng)。

  已經(jīng)觀察到PEG介導(dǎo)的過敏反應(yīng),,例如,,在臨床造影劑[171]和多柔比星脂質(zhì)體制劑中。盡管如此,,當(dāng)前SARS-CoV-2疫苗的給藥劑量對應(yīng)于PEG總劑量,,比這些產(chǎn)品中發(fā)現(xiàn)的劑量低至少15倍,這似乎減少了這種可能性,。

  另一種可能是反應(yīng)本質(zhì)上是過敏樣反應(yīng),,但是對炎癥和其他因素的非特異性反應(yīng)。目前正在進(jìn)行一項臨床研究,以進(jìn)一步闡明該問題,。

  在過去的二十年里,,mRNA療法的進(jìn)展是非凡的,從使用改良核苷和序列工程來確定控制mRNA先天免疫原性的手段,,以及mRNA在疫苗和其他治療適應(yīng)癥中的應(yīng)用開始,。

  與以前的系統(tǒng)相比,采用siRNA遞送中使用的脂質(zhì)納米顆粒原型導(dǎo)致遞送效率提高了一個數(shù)量級,,并在不斷改進(jìn),,主要是由于設(shè)計了新類別的可電離脂質(zhì)。mRNA LNP結(jié)構(gòu),、功能,、效力、靶向性和生物學(xué)特征的許多方面如佐劑性等,,仍有待探索,,以便充分開發(fā)這種強(qiáng)大和變革性治療方式的潛力。

  參考文獻(xiàn):Nanomaterial Delivery Systems for mRNA Vaccines,,Published online 2021 Jan 19. doi: 10.3390/vaccines9010065

  文章來源:藥啟程公眾號

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